Применение микроимпульсного и непрерывного лазерного излучения при навигационном топографически ориентированном лечении фокального диабетического макулярного отека

Цель — проанализировать клиническую эффективность субпорогового лазерного лечения фокального диабетического макулярного отека (ДМО) в непрерывном и микроимпульсном режиме с использованием навигационной системы на основе данных оптической когерентной томографии-ангиографии (ОКТ-А).

Пациенты и методы. Под наблюдением находились 33 пациента (33 глаза) с фокальным ДМО до и после лазерного лечения. Всем пациентам выполняли ОКТ-А высокого разрешения по протоколу HD Angio Retina 6×6 мм на приборах RTVue-100 XR Avanti (Optovue, США) и SOLIX (Optovue, США). Высота отека в фовеа составила в среднем по группе 304,5 ± 5,4 мкм, в зоне отека за пределами фовеа — в среднем 336,5 ± 7,5 мкм, исходная максимально корригированная острота зрения (МКОЗ) — 0,75 ± 0,06. Центральная светочувствительность (СЧ) до лечения составила 24,10 ± 0,48 дБ. Лечение осуществлялось с помощью навигационной лазерной системы NAVILAS 577S (OD-OS, Германия). Результаты оценивали в сроки 1, 3 и 6 месяцев после лечения.

Результаты. Через 1 месяц после лазерного лечения центральная толщина сетчатки (ЦТС) в среднем по группе составила: в фовеа — 294,00 ± 5,38 мкм, за пределами фовеа — 318,50 ± 6,44 мкм. МКОЗ повысилась в среднем до 0,80 ± 0,06; СЧ центральной зоны — до 24,65 ± 0,47 дБ. Через 3 месяца наблюдалось дальнейшее снижение высоты отека (ЦТС в фовеа составила 252,50 ± 2,19 мкм, за пределами фовеа — 280,50 ± 3,75 мкм). МКОЗ повысилась в среднем по группе до 0,85 ± 0,06, СЧ центральной зоны — 25,50 ± 0,30 дБ. Через 6 месяцев ЦТС в среднем по группе составила: в фовеа — 246,50 ± 1,81 мкм, за пределами фовеа — 273,50 ± 4,56 мкм. Достигнуто стабильное повышение показателей МКОЗ — 0,85 ± 0,06 и СЧ центральной зоны — 26,65 ± 0,16 дБ. В сроки 1, 3 и 6 месяцев после лечения наблюдалось увеличение сосудистой плотности в глубоком сосудистом комплексе (ГСК) и поверхностном сосудистом сплетении (ПСС).

Заключение. Полученные предварительные результаты свидетельствуют об эффективности навигационного субпорогового лазерного лечения ДМО в микроимпульсном и непрерывном режиме, основанного на прицельном топографически ориентированном воздействии по данным ОКТ-ангиографии. 

1. Yau J.W., Rogers S. L, Kawasaki R., Lamoureux E.L., Kowalski J.W., Bek T., Chen S.J., Dekker J.M., Fletcher A., Grauslund J., Haffner S., Hamman R.F., Ikram M.K., Kayama T., Klein B.E., Klein R., Krishnaiah S., Mayurasakorn K., O’Hare J.P., Orchard T.J., Porta M., Rema M., Roy M.S., Sharma T., Shaw J., Taylor H., Tielsch J.M., Varma R., Wang J.J., Wang N., West S., Xu L., Yasuda M., Zhang X., Mitchell P., Wong T.Y. Meta-Analysis for Eye Disease (META-EYE) Study Group. Global prevalence and major risk factors of diabetic retinopathy. Diabetes Care. 2012;35(3):556– 564. DOI: 10.2337/dc11-1909

2. Forooghian F., Stetson P.F., Meyer S.A., Chew E.Y., Wong W.T., Cukras C., Meyerle C.B., Ferris F.L. 3rd. Relationship between photoreceptor outer segment length and visual acuity in diabetic macular edema. Retina. 2010;30(1):63–70. DOI: 10.1097/IAE.0b013e3181bd2c5a

3. Schmidt-Erfurth, J.U., Garcia-Arumi, F. Bandello, Berg K., Chakravarthy U., Gerendas B.S., Jonas J., Larsen M., Tadayoni R., Loewenstein A. Guidelines for the Management of Diabetic Macular Edema by the European Society of Retina Specialists (EURETINA). Ophthalmologica. 2017;237(4):185–222. DOI: 10.1159/000458539

4. Maltsev D.S., Kulikov A.N., Burnasheva M.A., Kazak A.A., Chhablani J. Efficacy of navigated focal laser photocoagulation in diabetic macular edema planned with en face optical coherence tomography versus fluorescein angiography. Int Ophthalmol. 2020;40(8):1913–1921. DOI: 10.1007/s10792-020-01363-y

5. Muqit M.M., Gray J.C., Marcellino G.R., Henson D.B., Young L.B., Patton N., Charles S.J., Turner G.S., Stanga P.E. Barely visible 10-millisecond pascal laser photocoagulation for diabetic macular edema: observations of clinical effect and burn localization. Am J Ophthalmol. 2010; 149(6):979–986.e2. DOI: 10.1016/j.ajo.2010.01.032

6. Murakami A. Subthreshold Photocoagulation Using Endpoint Management in the PASCAL® System for Diffuse Diabetic Macular Edema. J Ophthalmol. 2018;2018:7465794. DOI: 10.1155/2018/7465794

7. Wilson A.S., Hobbs B.G., Shen W.Y., Speed T.P., Schmidt U., Begley C.G., Rakoczy P.E. Argon laser photocoagulation-induced modification of gene expression in the retina. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2003;44(4):1426–1434. DOI: 10.1167/iovs.02-0622

8. Sramek C., Mackanos M., Spitler R., Leung L.S., Nomoto H., Contag C.H., Palanker D. Non-damaging retinal phototherapy: dynamic range of heat shock protein expression. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2011 Mar 28;52(3):1780–1787. DOI: 10.1167/iovs.10-5917

9. Du S, Zhang Q, Zhang S, Wang L, Lian J. Heat shock protein 70 expression induced by diode laser irradiation on choroid-retinal endothelial cells in vitro. Mol Vis. 2012;18:2380–2387. Epub 2012 Sep 21. PMID: 23049238; PMCID: PMC3462596

10. Pei-Pei W., Shi-Zhou H., Zhen T., Lin L., Ying L., Jiexiong O., Wen-Bo Z., ChenJin J. Randomised clinical trial evaluating best-corrected visual acuity and central macular thickness after 532-nm subthreshold laser grid photocoagulation treatment in diabetic macular oedema. Eye (Lond). 2015;29(3):313–321; quiz 322. DOI: 10.1038/eye.2015.1

11. Vujosevic S., Midena E. Retinal layers changes in human preclinical and early clinical diabetic retinopathy support early retinal neuronal and Müller cells alterations. J Diabetes Res. 2013;2013:905058. DOI: 10.1155/2013/905058

12. Reichenbach A., Bringmann A. Glia of the human retina. Glia. 2020;68(4):768–796. DOI: 10.1002/glia.23727

13. Midena E., Bini S., Martini F., Enrica C., Pilotto E., Micera A., Esposito G., Vujosevic S. Changes of aqueous humor müller cells’ biomarkers in human patients affected by diabetic macular edema after subthreshold micropulse laser treatment. Retina. 2020;40(1):126–134. DOI: 10.1097/IAE.0000000000002356

14. Luttrull J.K., Dorin G. Subthreshold diode micropulse laser photocoagulation (SDM) as invisible retinal phototherapy for diabetic macular edema: a review. Curr Diabetes Rev. 2012;8(4):274–284. DOI: 10.2174/157339912800840523

15. Vujosevic S., Gatti V., Muraca A., Brambilla M., Villani E., Nucci P., Rossetti L., De Cilla’ S. Optical coherence tomography angiography changes after subthreshold micropulse yellow laser in diabetic macular edema. Retina. 2020 Feb;40(2):312–321. DOI: 10.1097/IAE.0000000000002383

16. Vujosevic S., Frizziero L., Martini F., Bini S., Convento E., Cavarzeran F., Midena E. Single Retinal Layer Changes After Subthreshold Micropulse Yellow Laser in Diabetic Macular Edema. Ophthalmic Surg Lasers Imaging Retina. 2018;49(11):e218– e225. DOI: 10.3928/23258160-20181101-22

17. Filloy A., Chong V., Solé E. Subthreshold yellow laser for fovea-involving diabetic macular edema in a series of patients with good vision: effectiveness and safety of a fovea-sparing technique. BMC Ophthalmol. 2020;20(1):266. DOI: 10.1186/s12886020-01536-4

18. Nesper P.L., Scarinci F., Fawzi A.A. Adaptive Optics Reveals Photoreceptor Abnormalities in Diabetic Macular Ischemia. PLoS One. 2017;12(1):e0169926. DOI: 10.1371/journal.pone.0169926

19. Suciu C.-I., Suciu V.-I., Nicoara S.-D. Optical Coherence Tomography (Angiography) Biomarkers in the Assessment and Monitoring of Diabetic Macular Edema. J Diabetes Res. 2020; 2020:6655021. DOI: 10.1155/2020/6655021

20. Horii T., Murakami T., Nishijima K., Sakamoto A., Ota M., Yoshimura N. Optical coherence tomographic characteristics of microaneurysms in diabetic retinopathy. Am J Ophthalmol. 2010;150(6):840–848. DOI: 10.1016/j.ajo.2010.06.015

21. Newman E., Reichenbach A. The Müller cell: a functional element of the retina. Trends Neurosci. 1996;19(8):307–312. DOI: 10.1016/0166-2236(96)10040-0

22. Cilla S.D., Mazzolani F., Polo L.D., Viola F., Ratiglia R., Orzalesi N. The Evaluation of the Variability of Retinal Edema With HRT III Edema Index and With OCT in Patients With Diabetic Retinopathy. Medicine 2007. ID: 83316138

23. Yu D.Y., Cringle S.J., Su E., Yu P.K., Humayun M.S., Dorin G. Laser-induced changes in intraretinal oxygen distribution in pigmented rabbits. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2005;46(3):988–999. DOI: 10.1167/iovs.04-0767