Полимеразная цепная реакция в практике ведения пациентов с офтальмогерпесом переднего отдела глаза: сравнительное исследование эффективности клинического применения

Целью данной публикации является информирование врачей-офтальмологов о высокой клинической информативности ПЦР при офтальмогерпесе переднего отдела глаза.

Пациенты и методы. Под нашим наблюдением за период с 2013 по 2021 г. находились 172 пациента с офтальмогерпесом переднего отдела глаза, группу сравнения составили здоровые добровольцы (n = 28). Выявление ДНК семи герпесвирусов (ВПГ-1, 2, ВВЗ, ВЭБ, ЦМВ, ВГЧ-6, ВГЧ-7) в слезе, слюне, сыворотке крови и моче проводили методом ПЦР с флуоресцентной детекцией результатов по конечной точке (формат «Flash») в качественной и количественной модификации до и на фоне системной противовирусной терапии в повышенных суточных дозировках (3 г валацикловира / 1,5 г фамцикловира).

Результаты. В группе пациентов наблюдалась продукция герпесвирусов со следующей частотой: от 2,7 до 15,2 % в слезе, до 30,4 % в слюне, от 6 до 20,1 % в моче, и реже всего ДНК герпесвирусов выявлялась в сыворотке крови. Проведенный сравнительный анализ показал достоверность различий в распределении частот продукции ДНК герпесвирусов между здоровыми и пациентами. В 61 % случаев клиническая манифестация офтальмогерпеса сопровождается детекцией 2-х и более герпесвирусов. Системная противовирусная терапия в повышенных дозах к 28-му дню наблюдения приводит к сокращению доли пациентов, продуцирующих ДНК герпесвирусов и к редукции клинических симптомов.

Выводы. Офтальмогерпес переднего отдела глаза является микст-герпетическим воспалительным заболеванием глаза, при котором метод ПЦР выявляет первичную вирусную нагрузку в биологических секретах и позволяет проводить контроль эффективности проводимой системной противовирусной терапии. 

1. Майчук Ю.Ф. Оптимизация фармакотерапии воспалительных болезней глазной поверхности. Российский офтальмологический журнал. 2008;1(3):18–25.

2. Каспаров А.А. Офтальмогерпес. Москва: Медицина, 1994. 222 с.

3. Каспарова Ел.А., Каспаров А.А., Марченко Н.Р., ПурАкбариан Н.А., Макарова М.А., Бородина Н.В., Смиренная Е.В. Диагностика и лечение герпетической рецидивирующей эрозии роговицы. Вестник офтальмологии. 2010;126(5):3–8.

4. Кричевская Г.И., Анджелов В.О., Катаргина Л.А., Майчук Ю.Ф., Хватова А.В., Звонарев А.Ю., Кулякина М.Н., Казаченко М.А., Зайцев И.З. Распространенность и клиническое значение активной цитомегаловирусной инфекции у больных с офтальмопатологией воспалительного характера. Вестник офтальмологии. 2000;116(5):51–54.

5. Калибердина А.Ф. Случаи герпетических и цитомегаловирусных поражений глаз. Вестник офтальмологии. 2003;119(6):43–44.

6. Мальханов В.Б., Зайнутдинова Г.Х., Шевчук Н.Е., Сергеева О.А. Реактивация цитомегаловирусной инфекции у больных передними увеитами. Медицинский вестник Башкортостана. 2011;6(1):38–41.

7. Аляпкина Ю.С., Варламов Д.А., Пашко Ю.П., Алексеев Я.И., Евсегнеева Ж.В., Филатова О.Н., Щербо И.В. Разработка и апробация тестсистем CMVPBКоличество и HSV1,2PBКоличество для выявления и количественного определения герпесвирусов в клиническом материале методом ПЦР в режиме реального времени (ПЦРРВ). Клиническая лабораторная диагностика. 2008;9:42–42а.

8. Мурина Е.А., Голева О.В., Осипова З.А. Методы вирусологической диагностики герпесвирусных инфекций (обзор литературы). Медицина экстремальных ситуаций. 2015;1:27–40.

9. Пирогов Н.Н., Портенко Е.Г., Столяров Д.И. Хронический фаринготонзиллит на фоне герпетической инфекции. Folia Otorhinolaryngologiae et Pathologiae Respiratoriae. 2017;23(2):33–44.

10. Нероев В.В., Катаргина Л.А., Ковалева Л.А., Кричевская Г.И., Балацкая Н.В. Клинические аспекты бактериальной язвы роговицы затяжного течения, роль вирусов герпеса в ее патогенезе, тактика лечения. Офтальмология. 2019;16(1S):40–44. DOI: 10.18008/1816509520191S4044

11. Миронкова Е.А., Макаров П.В., Слепова О.С., Гундорова Р.А., Кугушева А.Э., Демкин В.В., Садохина Т.С. Инфицированность донорского материала вирусами группы герпеса как возможная причина развития болезни трансплантата при сквозной кератопластике. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2012;14(4):48–51. DOI: 10.15825/19951191201244851

12. Robert P.Y., Traccard I., Adenis J.P., Denis F., RangerRogez S. Multiplex detection of herpesviruses in tear fluid using the “stair primers” PCR method: prospective study of 93 patients. Journal of medical virology. 2002 Apr;66(4):506–511. DOI: 10.1002/jmv.2173

13. Sugita S., Shimizu N., Watanabe K., Mizukami M., Morio T., Sugamoto Y., Mochizuki M. Use of multiplex PCR and realtime PCR to detect human herpes virus genome in ocular fluids of patients with uveitis. The British journal of ophthalmology. 2008;92(7):928–932. DOI: 10.1136/bjo.2007.133967

14. Чернакова Г.М., Майчук Д.Ю., Клещева Е.А., Лошкарева А.О., Семенова Т.Б. Рекомендации по ведению пациентов с герпетическим кератитом/ кератоувеитом затяжного течения: от проблем к решению. Офтальмология. 2019;16(4):537–545. DOI: 10.18008/1816509520194537545

15. Чернакова Г.М., Майчук Д.Ю., Слонимский Ю.Б., Слонимский А.Ю., Клещева Е.А., Мезенцева М.В. Новые свойства слезозаместителя, содержащего гепарин, в условиях in vitro (потенциальный противовирусный и противовоспалительный эффект). Офтальмология. 2018;15(2):182–188. DOI: 10.18008/1816509520182182188

16. Rousseau A., Boutolleau D., Titier K., Bourcier T., Chiquet C., Weber M., Colin J., Gueudry J., M’Garrech M., Bodaghi B., Burrel S., Agut H., Deback C.; HEDGOF (Herpes Eye Disease Group of France), Labetoulle M. Recurrent herpetic keratitis despite antiviral prophylaxis: A virological and pharmacological study. Antiviral Res. 2017;146:205–212. DOI: 10.1016/j.antiviral.2017.09.013

17. Чернакова Г.М., Майчук Д.Ю., Семенова Т.Б. Клиника, диагностика и терапия герпетического кератитана современном этапе: три грани одной проблемы. Российский офтальмологический журнал. 2017;10(1):90–97. DOI: 10.21516/2072007620171019097