Импрессионная цитология бульбарной конъюнктивы у пациентов рефракционного профиля

Актуальность. Поддержание здоровой глазной поверхности очень важно как для выполнения качественной зрительной работы, так и для удовлетворительного социально активного образа жизни. Для защиты и поддержания нормального баланса глазной поверхности необходима стабильная и функциональная слезная пленка.
Цель: определить плотность бокаловидных клеток бульбарной конъюнктивы у пациентов рефракционного профиля на до- и послеоперационном этапе с учетом состояния глазной поверхности.
Пациенты и методы. В рамках данной работы были обследованы 62 пациента (62 глаза) рефракционного профиля, средний возраст которых составил 26,5 ± 2,1 года. Всем пациентам, помимо стандартной рефракционной диагностики, определяющей возможность безопасного проведения кераторефракционной хирургии, была проведена оценка статуса глазной поверхности: тест Ширмера-1, проба Норна, окрашивание глазной поверхности 0,1 % р-ром флюоресцеина и 0,1 % раствором лиссаминового зеленого, определение времени разрыва слезной пленки и потери секрета мейбомиевых желез при мейбографии верхнего и нижнего века на диагностическом модуле щелевой лампы Mediworks (Китай). Сроки наблюдения составили до операции, 1 неделя, 1, 3 и 6 месяцев после операции.
Результаты. Было выявлено неравномерное распределение плотности бокаловидных клеток во всех группах исследования с последующим восстановлением к 6-му месяцу.
Заключение. Результаты оценки состояния глазной поверхности с помощью стандартных офтальмологических методов исследования и с помощью современного диагностического модуля скрининга синдрома сухого глаза соответствовали нормальному течению восстановительного периода после кераторефракционной хирургии на фоне назначенной таргетной терапии в борьбе с индуцированным синдромом сухого глаза, в то время как исследование количества бокаловидных клеток показало наличие изменений, в частности, в группах с исходным наличием синдромом сухого глаза, что подтверждает высокую информативность и диагностическую значимость импрессионной цитологии.

1. Novack GD, Asbell P, Barabino S, Michael VW, Joseph B, Gary NF, Goldstein M, Michael AL, Schrader S, Stapleton F. FOS DEWS II Clinical Trial De-sign Report. Ocul Surf. Author manuscript. 2017;15(3):629–649. doi: 10.1016/j.jtos.2017.05.009.

2. Craig JP, Nichols KK, Akpek EK, Caffery B, Dua HS, Joo Ch.K, Liu Z, Nelson JD, Nichols JJ, Tsubota K, Stapleton F. TFOS DEWS II definition and classification report. Ocul Surf. 2017;15(3):276–283. doi: 10.1016/j.jtos.2017.05.008.

3. Дога АВ, Мушкова ИА, Семенов АД, Каримова АН, Кечин ЕВ.. Этапы развития и современные аспекты кераторефракционной хирургии. Практическая медицина. 2016;6(98):36–41.

4. Morgan IG, French AN, Ashby RS. The epidemics of myopia: aetiology and prevention. Prog Retin Eye Res. 2018;62:134–149. doi: 10.1016/j.preteyeres.2017.09.004.

5. Hyman L. Myopic and hyperopic refractive error in adults: an overview. Ophthalmic Epidemiol. 2007;14(4):192–197. doi: 10.1080/09286580701535517.

6. D’Souza S, James E, Swarup R, Mahuvakar S, Pradhan A, Gupta K. Algorithmic approach to diagnosis and management of post-refractive surgerydryeye. Indian J Ophthalmol. 2020;68(12):2888–2894. doi: 10.4103/ijo.IJO_1957_20.

7. Edward YW, Leung A, Rao S, Lam DS. Effect of laser in situ keratomileusis on tear stability. Ophthalmology. 2000;107(12):2131–2135. doi: 10.1016/s0161-6420(00)00388-2.

8. Wang B, Naidu RK, Chu R, Dai J, Qu X, Zhou H. Dry eye disease following refractive surgery: A 12-month follow-up of SMILE versus FS-LASIK in high myopia. J Ophthalmol. 2015;2015:132417. doi: 10.1155/2015/132417.

9. Elfadl MA, Zein HA, Eid AM, Abd Elaleem AT. The ablation depth effect on dry eye after LASIK treatment for myopia. J Egypt Ophthalmol Soc. 2018;111:96.

10. Pérez-Santonja JJ, Sakla HF, Cardona C, Chipont E, Alió JL. Corneal sensitivity after photorefractive keratectomy and laser in situ keratomileusis for low myopia. Am J Ophthalmol. 1999;127(5):497–504. doi: 10.1016/s0002-9394 (98)00444-9.

11. Cruzat A, Qazi Y, Hamrah P. In Vivo Confocal Microscopy of Corneal Nerves in Health and Disease. Ocul Surf. 2017;15(1):15–47. doi: 10.1016/j.jtos.2016.09.004.

12. Dartt DA. Control of mucin production by ocular surface epithelial cells. Exp Eye Res. 2004;78(2):173–785. doi: 10.1016/j.exer.2003.10.005.

13. Dartt DA, Hodges RR, Li D, Shatos MA, Lashkari K, Serhan CN. Conjunctival goblet cell secretion stimulated by leukotrienes is reduced by resolved by resolvins D1 and E1 to promote resolution of inflammation. J Immunol. 2011;186(7):4455–4466. doi: 10.4049/jimmunol.1000833.

14. Massingale ML, Li X, Vallabhajosyula M, Chen D, Wei Y, Asbell PA. Analysis of inflammatory cytokines in the tears of dry eye patients. Cornea. 2009;28(9):1023–1027. doi: 10.1097/ICO.0b013e3181a16578.

15. Ryan DS, Bower KS, MD, Sia RK, Shatos MA, Howard RS, Mines MJ, Stutzman RD, Dartt DA. Goblet cell response after photorefractive keratectomy and laser in situ keratomileusis. J Cataract Refract Surg. 2016;42(8):1181–1189. doi: 10.1016/j.jcrs.2016.05.008.

16. Egbert PR, Lauber S, Maurice DM. A simple conjunctival biopsy. Am J Ophthalmol. 1977;84(6):798–801. doi: 10.1016/0002‑9394(77)90499‑8.

17. Thatcher RW, Darougar S, Jones, B. Conjunctival impression cytology. Arch Ophthalmol. 1977;95(4):678–681. doi: 10.1001/archopht.1977.04450040144022.

18. Kunert KS, Tisdale AS, Gipson IK. Goblet cell numbers and epithelial proliferation in the conjunctiva of patients with dry eye syndrome treated with cyclosporine. Arch Ophthalmol. 2002;120:330–337. doi: 10.1001/archopht.120.3.330.

19. Дога АВ, Мушкова ИА, Борзенок СА, Каримова АН, Хубецова МХ, Островский ДС, Образцова МР. Основные аспекты импрессионной цитологии бульбарной конъюнктивы. Вестник национального медико-хирургического центра им. Н.И. Пирогова. 2023;26–29..

20. Shiboski SC, Shiboski CH , Criswell LA, Baer AN, Challacombe S, Lanfranchi H, Schiødt M, Umehara H, Vivino F, Zhao Y, Dong Y, Greenspan D, Heidenreich AM, Helin P, Kirkham B, Kitagawa K, Larkin G, Li M, Lietman T, Lindegaard J, Mc‑Namara N, Sack K, Shirlaw P, Sugai S, Vollenweider C, Whitcher J, Wu A, Zhang S, Zhang W, Greenspan JS, Daniels TE. American College of Rheumatology classification criteria for Sjögren’s syndrome: a data-driven, expert consensus approach in the Sjögren’s International Collaborative Clinical Alliance cohort. Arthritis Care Res. (Hoboken). 2012;64(4):475–487. doi: 10.1002/acr.21591.

21. Pflugfelder SC, Tseng SC, Yoshino K, Monroy D, Felix C, Reis BL. Correlation of goblet cell density and mucosal epithelial membrane mucin expression with rose bengal staining in patients with ocular irritation. Ophthalmology. 1997;104(2):223–235. doi: 10.1016/s0161-6420(97)30330-3.

22. Khimani KS, Go JA, Souza RG, Mitchell T, Yu Z, Paiva CS, Saumur M, Stephen C. Regional Comparison of Goblet Cell Number and Area in Exposed and Covered Dry Eyes and Their Correlation with Tear MUC5AC. Sci Rep. 2020;10:2933. doi: 10.1038/s41598-020-59956-7.

23. Kumar P, Bhargava R, Kumar M, Ranjan S, Kumar M,Verma P. The Correlation of Routine Tear Function Tests and Conjunctival Impression Cytology in Dry Eye Syndrome. Korean J Ophthalmol. 2014;28(2):122–129. doi: 10.3341/kjo.2014.28.2.122.

24. Королёва ИА, Оганезова ЖГ, Егоров ЕА. Оптимизация выбора препаратов слезозаместительной терапии при синдроме «сухого глаза». РМЖ. Клиническая офтальмология. 2016;4:227–231. doi: 10.21689/2311-7729-2016-16-4-227-231.

25. Hahne M, Reichl S. Simulation of corneal epithelial injuries by mechanical and corrosive damage: Influence of fetal bovine serum and dexpanthenol on epithelial regeneration in a cell culture model. Ophthalmologe. 2010;107(6):529–536. doi: 10.1007 /s00347-009-2079-x.

26. Raczyńska K, Iwaszkiewicz-Bilikiewicz B, Stozkowska W, Sadlak-Nowicka J. Clinical evaluation of provitamin B5 drops and gel for postoperative treatment of corneal and conjuctival injuries. Klin. Oczna. 2003;105(4):175–178.

27. Tabuchi N, Toshida H, Koike D, Odaka A, Suto C, Ohta T, Murakami A. Effect of retinol palmitate on corneal and conjunctival mucin gene expression in a rat dry eye model after injury. J Ocul Pharmacol Ther. 2017;33(1):24–33. doi: 10.1089/jop.2015.0161.