Оптические и морфометрические характеристики роговицы и передней камеры глаза кроликов породы советская шиншилла

Цель: изучить параметры роговицы и передней камеры глаза кролика породы cоветская шиншилла путем Шаймпфлюг-визуализации, ОКТ переднего отрезка глаза и эндотелиальной микроскопии. 

Методы. На 30 глазах 30 мужских особей кролика провели фоторегистрацию, шаймпфлюг-томографию, ОКТ, эндотелиальную биомикроскопию роговицы в условиях внутривенного наркоза. Статистическая обработка данных производилась при помощи программного пакета SPSS 26.0. 

Результаты. Полученные данные оптических и морфометрических параметров соответствовали аналогичным параметрам новозеландского белого кролика. В 32,5 % площадь клеток находилась в диапазоне от 400 до 500 мкм², в 31,9 % — в пределах 300–400 мкм², в 11,6 и 14,0 % находилась в пределах 200–300 и 500–600 мкм² соответственно. Большинство клеток (56,6 %) было представлено гексагональными, 20,3 % — пентагональными и 16,6 % — гептагональными клетками. Величина обратного светорассеивания роговицы уменьшается во всех слоях от центра к периферии. По данным ОКТ, средняя толщина эпителия роговицы кролика составила 44,19 ± 5,10 мкм, средняя толщина стромы — 343,23 ± 41,40 мкм, толщина роговицы в целом в центральной зоне — 388,37 ± 41,45 мкм. Данные корреляционного анализа показали наличие сильной и умеренной взаимосвязи объема передней камеры, диаметра зрачка и величины радужно-роговичного угла. 

Заключение. Оптические и морфометрические характеристики роговицы и передней камеры глаза кроликов породы советская шиншилла могут быть полезны при планировании экспериментов с использованием данных животных в офтальмологии. Не было выявлено значимых различий в рефракционных и морфологических свойствах роговицы между кроликами породы советская шиншилла и новозеладским белым кроликом. Представляет интерес обнаруженная при помощи корреляционного анализа прямая взаимосвязь объема передней камеры, диаметра зрачка и величины радужно-роговичного угла, что значимо для гидродинамики водянистой влаги и хирургических манипуляций на 

1. Chisolm JJ. The Successful Transplanting of a Piece of Rabbit’s Cornea into the Human Eye, for the Purpose of Restoring Sight to a Blind Man. Am J Dent Sci. 1888;22(3):118–124.

2. Гайдук ИА. Вклад гистологов научной школы Военно-медицинской академии в исследование десцеметова эпителия. СПб.: Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова, 2023.

3. Moffatt SL, Cartwright VA, Stumpf TH. Centennial review of corneal transplantation. Clin Exp Ophthalmol. 2005;33(6):642–657. doi: 10.1111/j.1442-9071.2005.01134.x.

4. Wilson SE. The Cornea: No Difference in the Wound Healing Response to Injury Related to Whether, or Not, There’s a Bowman’s Layer. Biomolecules. 2023;13(5):771. doi: 10.3390/biom13050771.

5. Wilson SE. Bowman’s layer in the corneastructure and function and regeneration. Exp Eye Res. 2020;195:108033. doi: 10.1016/j.exer.2020.108033.

6. Petroll WM, Kivanany PB, Hagenasr D, Graham EK. Corneal Fibroblast Migration Patterns During Intrastromal Wound Healing Correlate With ECM Structure and Alignment. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2015;56(12):7352–7361. doi: 10.1167/iovs.15-17978.

7. Ibrahim N, Hifny A, Elhanbaly R, El-Desoky SMM, Gaber W. Morphogenetic events influencing corneal maturation, development, and transparency: Light and electron microscopic study. Microsc Res Tech. 2023;86(5):539–555. doi: 10.1002/jemt.24293.

8. Abdo M, Haddad S, Emam M. Development of the New Zealand White Rabbit Eye: I. Preand Postnatal Development of Eye Tunics. Anat Histol Embryol. 2017;46(5):423–430. doi: 10.1111/ahe.12284.

9. Baraya M, Moore J, Lopes BT, Wu R, Bao F, Zheng X, Consejo A, Abass A. Limitations of Reconstructing Pentacam Rabbit Corneal Tomography by Zernike Polynomials. Bioengineering (Basel). 2022;10(1):39. doi: 10.3390/bioengineering10010039.

10. Yüksel H, Türkcü FM, Ari Ş, Çinar Y, Cingü AK, Şahin M, Şahin A, Özkurt Z, Çaça İ. Anterior segment parameters of rabbits with rotating Scheimpflug camera. Vet Ophthalmol. 2015;18(3):210–213. doi: 10.1111/vop.12150.

11. Vohra M, Gour A, Rajput J, Sangwan B. Burn-Induced Neurotrophic Keratitis Model in New Zealand Rabbit Investigated Using Medical Clinical Readouts and In Vivo Confocal Microscopy (IVCM). Cells. 2024;13(5):379. doi: 10.3390/cells13050379.

12. Шевченко АА, Черных ОЮ, Стрельников ВВ, Шевченко ЛВ. Биологические особенности и болезни нутрий, кроликов. Учебное пособие. Краснодар: КубГАУ, 2008.

13. Федосеева ЕВ, Ченцова НВ, Боровкова НВ. Возможности богатой тромбоцитами плазмы в лечении дефектов роговицы (экспериментальное исследование). Точка зрения. Восток — Запад. 2019;1:51–53. doi: 10.25276/2410-1257-2019-1-51-53.

14. Ярмамедов ДМ, Затолокина МА, Липатов ВА. Морфологические аспекты динамики регенерации роговицы при лечении инфицированной травмы различными методами. Вестник Волгоградского государственного медицинского университета. 2018;4(68):73–76. doi: 10.19163/1994-9480-2018-4(68)-73-76.

15. Германова ВН, Карлова ЕВ, Нефедова ИФ, Радайкина МВ. Экспериментальная модель хронического воспаления тканей глазной поверхности, ассоциированного с медикаментозным лечением глаукомы. Точка зрения. Восток — Запад. 2022;2:12–19. doi: 10.25276/24101257-2022-2-12-19.

16. Анатычук ЛИ, Пасечникова НВ, Задорожный ОС, Назаретян РЭ. Распределение температуры в различных отделах глаза кролика в зависимости от температуры окружающей среды. Офтальмология. Восточная Европа. 2015;4(27):60–68.

17. Мушкова ИА, Борзенок СА, Каримова АН, Шкандина ЮВ. Гистоморфологические изменения роговицы кролика после имплантации внутрироговичных линз и электронно-микроскопическое обоснование полученных результатов. Вестник Оренбургского государственного университета. 2015;12(187):151–154.

18. Малюгин БЭ, Терещенко АВ, Антонова ОП. Изучение процессов репопуляции роговицы кролика эндотелиальными клетками при экспериментальном моделировании частичной трансплантации эндотелия и десцеметовой мембраны. Офтальмохирургия. 2019;4:7–15. doi: 10.25276/0235-4160-2019-4-7-15.