Нейротрофический кератит. Этиология, патогенез, клинические проявления. Обзор литературы. Часть 1
https://doi.org/10.18008/1816-5095-2022-1-38-45
Аннотация
Нейротрофический кератит (также называемый нейротрофической кератопатией) (НТК) представляет собой дегенеративное заболевание роговицы, сопровождающееся нейрогенным воспалением. Оно обусловлено нарушением чувствительной иннервации тройничного нерва и характеризуется пониженной чувствительностью роговицы и нарушением процесса ее заживления. Вызывающие НТК повреждения тройничного нерва могут происходить на разных уровнях — от ядра до окончаний, расположенных в роговице, и быть обусловлены как глазными, так и системными заболеваниями. К наиболее распространенным причинам можно отнести герпетический кератит, диабет, химические ожоги, ятрогенные травмы при офтальмологических операциях, внутричерепные новообразования, нарушения мозгового кровообращения и нейрохирургические вмешательства. Изменения роговицы включают эпителиопатию (I степень), персистирующую эрозию (II степень), язву и ее осложнения (III степень). Определяющим диагностическим признаком НТК является снижение или потеря чувствительности роговицы. Морфологические характеристики нервов роговицы могут быть исследованы с помощью конфокальной микроскопии.
Об авторах
Е. А. Каспарова
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней»
Россия
Россия
Каспарова Евгения Аркадьевна, кандидат медицинских наук, ведущий научный сотрудник отдела патологии оптических сред глаза
ул. Россолимо, 11а, б, Москва, 119021
Н. Р. Марченко
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт глазных болезней»
Россия
Россия
Марченко Николай Ростиславович, кандидат медицинских наук, научный сотрудник отдела патологии оптических сред глаза
ул. Россолимо, 11а, б, Москва, 119021
Список литературы
1. Dua H.S., Said D.G., Messmer E.M., Rolando M., Benitez-Del-Castillo J.M., Hossain P.N., Shortt A.J., Geerling G., Nubile M., Figueiredo F.C., Rauz S., Mastropasqua L., Rama P., Baudouin C. Neurotrophic keratopathy. Prog. Retin. Eye Res. 2018 Sep;66:107–131. DOI: 10.1016/j.preteyeres.2018.04.003
2. Muller L.J., Marfurt C.F., Kruse F., Tervo T.M. Corneal nerves: structure, contents and function. Exp Eye Res. 2003;76(5):521–542.
3. Sigelman S., Friedenwald J.S. Mitotic and wound healing activities of the corneal epithelium: effect of sensory denervation. Arch Ophthalmol. 1954;52:46–57.
4. Simone S. De ricerche sul contenuto in acqua totale ed in azoto totale della cornea di coniglio in condizione di cheratite neuroparalitica sperimentale. Arch Ottalmol. 1958;62:151.
5. Mackie I.A. Neuroparalytic keratitis. In: Fraunfelder F., Roy F.H., Meyer S.M., editors. Current Ocular Therapy. Philadelphia, PA, USA: WB Saunders; 1995.
6. Sacchetti M., Lambiase A., Diagnosis and management of neurotrophic keratitis. Clin. Ophthalmol. 2014;8:571–579. DOI: 10.2147/OPTH.S45921
7. Labetoulle M., Auquier P., Conrad H., Crochard A., Daniloski M., Bouee S., El Hasnaoui A., Colin J. Incidence of herpes simplex virus keratitis in France. Ophthalmology. 2005;112:888–895.
8. Dworkin R.H., Johnson R.W., Breuer J., Gnann J.W., Levin M.J., Backonja M., Betts R.F., Gershon A.A., Haanpaa M.L., McKendrick M.W., Nurmikko T.J., Oaklander A.L., Oxman M.N., Pavan-Langston D., Petersen K.L., Rowbotham M.C., Schmader K.E., Stacey B.R., Tyring S.K., van Wijck A.J., Wallace M.S., Wassilew S.W., Whitley R.J. Recommendations for the management of herpes zoster. Clin. Infect. Dis. 2007;44 (Suppl. 1):S1–S26.
9. Bhatti M.T., Patel R. Neuro-ophthalmic considerations in trigeminal neuralgia and its surgical treatment. Curr. Opin. Ophthalmol. 2005;16:334–340.
10. Azuma M., Yabuta C., Fraunfelder F.W., Shearer T.R. Dry Eye in LASIK Patients, BMC Res Notes. 2014;7:420. DOI: 10.1186/1756-0500-7-420
11. Versura P., Giannaccare G., Pellegrini M., Sebastiani S., Campos E.C. Neurotrophic keratitis: current challenges and future prospects. Eye Brain. 2018;10:37–45. DOI: 10.2147/EB.S117261
12. Hamrah P., Cruzat A., Dastjerdi M.H., Zheng L., Shahatit B.M., Bayhan H.A., Dana R. Pavan-Langston Corneal sensation and subbasal nerve alterations in patients with herpes simplex keratitis: an in vivo confocal microscopy study. Ophthalmology. 2010;117(10):1930–1936. DOI: 10.1016/j.ophtha.2010.07.010
13. Lee B.H., McLaren J.W., Erie J.C., Hodge D.O., Bourne W.M. Reinnervation in the cornea after LASIK. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2002;43(12):3660–3664.
14. Semeraro F., Forbice E., Romano V. Neurotrophic keratitis. Ophthalmologica. 2014;231(4):191–197. DOI: 10.1159/000354380
15. Каспарова Евг.А., Каспаров А.А., Собкова О.И., Каспарова Ел.А., Розинова В.Н. Способ лечения гнойной язвы роговицы, развившейся на глазах с нейротрофическим кератитом и лагофтальмом. Вестник офтальмологии. 2019;135(5) ч. 2:220–225. DOI: 10.17116/oftalma2019135052220
16. Tavakoli M., Marshall A., Pitceathly R. Corneal confocal microscopy: a novel means to detect nerve fibre damage in idiopathic small fibre neuropathy. Exp Neurol. 2010;223(1):245–250. DOI: 10.1016/j.expneurol.2009.08.033
17. Аветисов С.Э., Черненкова Н.А., Cурнина З.В., Ахмеджанова Л.Т., Фокина А.С., Строков И.А. Возможности ранней диагностики диабетической полинейропатии на основе исследования нервных волокон роговицы. Вестник офтальмологии 2020;136(5):155–162. DOI: 10.17116/oftalma2020136052155
18. Banerjee P.J., Chandra A., Sullivan P.M., Charteris D.G. Neurotrophic corneal ulceration after retinal detachment surgery with retinectomy and endolaser: a case series. JAMA Ophthalmol. 2014;132(6):750–752. DOI: 10.1001/jamaophthalmol.2014.280
19. Qi H., Chuang E.Y., Yoon K.C., de Paiva C.S., Shine H.D., Jones D.B., Pflugfelder S.C., Li D.Q. Patterned expression of neurotrophic factors and receptors in human limbal and corneal regions. Mol. Vis. 2007;13:1934–1941.
20. Levi-Montalcini R. The nerve growth factor 35 years later. Science. 1987;237(4819):1154–1162.
21. Bonini S., Aloe L., Bonini S., Rama P., Lamagna A., Lambiase A. Nerve growth factor (NGF): an important molecule for trophism and healing of the ocular surface. Adv Exp Med Biol. 2002;506(Pt A):531–537. DOI: 10.1007/978-1-4615-0717-8_75
22. Lambiase A., Manni L., Bonini S., Rama P., Micera A., Aloe L. Nerve growth factor promotes corneal healing: structural, biochemical, and molecular analyses of rat and human corneas. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2000;41(5):1063–1069.
23. Heigle T.J., Pflugfelder S.C. Aqueous tear production in patients with neurotrophic keratitis. Cornea. 1996;15(2):135–138.
24. Sacchetti M., Lambiase A. Neurotrophic factors and corneal nerve regeneration. Neural Regen Res. 2017;12(8):1220–1224. DOI: 10.4103/1673-5374.213534
25. Hosoi J., Murphy G.F., Egan C.L., Lerner E.A., Grabbe S., Asahina A., Granstein R.D. Regulation of Langerhans cell function by nerves containing calcitonin generelated peptide. Nature. 1993;363:159–163.
26. Belmonte C., Acosta M.C., Gallar J. Neural basis of sensation in intact and injured corneas. Exp. Eye Res. 2004;78:513–525. DOI: 10.1016/j.exer.2003.09.023
27. Baudouin C., Aragona P., Messmer E.M., Tomlinson A., Calonge M., Boboridis K.G., Akova Y.A., Geerling G., Labetoulle M., Rolando M. Role of hyperosmolarity in the pathogenesis and management of dry eye disease: proceedings of the OCEAN group meeting. Ocul. Surf. 2013;11:246–258. DOI: 10.1016/j.jtos.2013.07.003
28. Fini M.E., Cook J.R., Mohan R. Proteolytic mechanisms in corneal ulceration and repair. Arch. Dermatol. Res. 1998;290 (Suppl. l):S12–S23.
29. Mohammed I., Said D.G., Dua H.S. Human antimicrobial peptides in ocular surface defense. Prog. Retin. Eye Res. 2017;61:1–22. DOI: 10.1016/j.preteyeres.2017.03.004
30. Pflugfelder S.C., Farley W., Luo L., Chen L.Z., de Paiva C.S., Olmos L.C., Li D.Q., Fini M.E. Matrix metalloproteinase-9 knockout confers resistance to corneal epithelial barrier disruption in experimental dry eye. Am. J. Pathol. 2005;166:61–71. DOI: 10.1016/S0002-9440(10)62232-8
31. Chotikavanich S., de Paiva C.S., de Li Q., Chen J.J., Bian F., Farley W.J., Pflugfelder S.C. Production and activity of matrix metalloproteinase-9 on the ocularsurface increase in dysfunctional tear syndrome. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2009;50:3203–3209. DOI: 10.1167/iovs.08-2476
32. Hamrah P., Cruzat A., Dastjerdi M.H., Prüss H., Zheng L., Shahatit B.M., Bayhan H.A., Dana R., Pavan-Langston D. Unilateral herpes zoster ophthalmicus results inbilateral corneal nerve alteration: an in vivo confocal microscopy study. Ophthalmology 2013;20:40–47. DOI: 10.1016/j.ophtha.2012.07.036
33. Cavalcanti B.M., Cruzat A., Sahin A., Pavan-Langston D., Samayoa E., Hamrah P. In vivo confocal microscopy detects bilateral changes of corneal immune cellsand nerves in unilateral herpes zoster ophthalmicus. Ocul. Surf. 2018;16:101–111. DOI: 10.1016/j.jtos.2017.09.004
34. Yamaguchi T., Turhan A., Harris D.L., Hu K., von Andrian H.P.U., Hamrah P. Bilateral nerve alterations in a unilateral experimental neurotrophic keratopathy model: a lateral conjunctival approach for trigeminal axotomy. PLoS One 2013;14:е70908. DOI: 10.1371/journal.pone.0070908
35. Yamaguchi T., Hamrah P., Shimazaki J. Bilateral alterations in corneal nerves,dendritic cells, and tear cytokine levels in ocular surface disease. Cornea 2016;35(Suppl.1):S65–S70. DOI: 10.1097/ICO.0000000000000989
36. Bonini S., Rama P., Olzi D., Lambiase A. Neurotrophic keratitis. Eye (Lond) 2003;17:989–995.
37. Alio J.L., Pastor S., Ruiz-Colecha J., Rodriguez A., Artola A. Treatment of ocular surface syndrome after LASIK with autologous platelet-rich plasma. J Refract Surg. 2007;23(6):617–619.
38. Ambrósio R. Jr, Tervo T., Wilson S.E. LASIK-associated dry eye and neurotrophic epitheliopathy: pathophysiology and strategies for prevention and treatment. J Refract Surg. 2008;24(4):396–407. DOI: 10.3928/1081597X-20080401-14
39. Bentivoglio A.R., Bressman S.B., Cassetta E., Carretta D., Tonali P., Albanese A. Analysis of blink rate patterns in normal subjects. Mov Disord. 1997;12(6):1028– 1034. DOI: 10.1002/mds.870120629
40. Al-Aqaba M.A., Otri A.M., Fares U., Miri A., Dua H.S. Organization of the regenerated nerves in human corneal grafts. Am J Ophthalmol. 2012;153(1):29–37.e4. DOI: 10.1016/j.ajo.2011.06.006
41. Zabel R., Mintsioulis G. Hyperplastic precorneal membranes. Extending the Spectrum of Neurotrophic Keratitis. Cornea. 1989;8(4):247–250.
42. Cavanagh H.D., Colley A.M., Pihlaja D,J. Persistent corneal epithelial defects, Int Ophthalmol Clin 1979;19(2):197–206.
43. Радзиховский Б.Л., Лучик В.И. Чувствительность роговицы и ее диагностическое значение в патологии глаза и организма. Киев: Здоров’я, 1974:11–21.
44. Golebiowski B., Papas E., Stapleton F. Assessing the sensory function of the ocular surface: implications of use of a non-contact air jet aesthesiometer versus the Cochet-Bonnet aesthesiometer. Exp Eye Res. 2011;92(5):408–413. DOI: 10.1016/j.exer.2011.02.016
45. Belmonte C., Acosta M.C., Schmelz M., Gallar J. Measurement of corneal sensitivity to mechanical and chemical stimulation with a CO2 esthesiometer. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1999;40(2):513–519.
46. Tesón M., Calonge M., Fernández I., Stern M.E., González-García M.J. Characterization by Belmonte’s gas esthesiometer of mechanical, chemical, and thermal corneal sensitivity thresholds in a normal population. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2012;53(6):3154–3160. DOI: 10.1167/iovs.11-9304
47. Dhillon V.K., Elalfy M.S., Al-Aqaba M., Gupta A., Basu S., Dua H.S. Corneal hypoesthesia with normal sub-basal nerve density following surgery for trigeminal neuralgia. Acta Ophthalmol. 2016;94(1):e6–10. DOI: 10.1111/aos.12697
Рецензия
Для цитирования:
Каспарова Е.А., Марченко Н.Р. Нейротрофический кератит. Этиология, патогенез, клинические проявления. Обзор литературы. Часть 1. Офтальмология. 2022;19(1):38-45. https://doi.org/10.18008/1816-5095-2022-1-38-45
For citation:
Kasparova E.A., Marchenko N.R. Neurotrophic Keratitis. Etiology, Pathogenesis, Clinical Manifestations. Review. Part 1. Ophthalmology in Russia. 2022;19(1):38-45. (In Russ.) https://doi.org/10.18008/1816-5095-2022-1-38-45
Просмотров:
5948
Послать статью по эл. почте 