Оптимизация выбора фракции, богатой тромбоцитами плазмы, для хирургического лечения макулярных разрывов

Цель: на основе клинического и морфофункционального анализа восстановления сетчатки и оценки клеточного состава, богатой тромбоцитами плазмы, определить ее оптимальную фракцию для хирургического лечения макулярного разрыва. Пациенты и методы. В настоящем исследовании представлены результаты 120 случаев хирургического лечения глаз с макулярным разрывом. Пациенты были разделены на 2 группы. В 1-й группе (60 глаз) применена разработанная в нашей клинике технология без использования послеоперационной тампонады витреальной полости, но с применением аутологичной богатой тромбоцитами плазмы (БоТП), во 2-й — традиционная технология лечения макулярных разрывов (60 глаз). Проанализирован клеточный состав БоТП 30 пациентов. Результаты. Через 2 месяца после операции у 119 пациентов наблюдалось восстановление всех слоев сетчатки в области макулярного разрыва и зафиксирована положительная динамика остроты зрения в сравнении с дооперационным периодом. После наблюдения в течение 6 месяцев после операции случаи рецидива макулярного разрыва не выявлены. Заключение. Лечебное значение БоТП заключается в тампонирующем и регенераторном эффекте. По результатам настоящего исследования для хирургии макулярного разрыва рационально использовать плазму из слоя чистой богатой тромбоцитами плазмы (P-PRP), которая содержит достаточное количество тромбоцитов, способных оказать положительный терапевтический эффект, и минимальное количество лейкоцитов, способных выполнить функции иммунной защиты и репарации сетчатки и окружающих тканей.

1. Global data on visual impairments 2010. Available by: http://www.who.int/blindness/GLOBALDATAFINALforweb.pdf. (date of application 16.09.2022).

2. Liu L, Enkh-Amgalan I, Wang NK, Chuang LH, Chen YP, Hwang YS, Chang CJ, Chen KJ, Wu WC, Chen TL, Lai CC. RESULTS OF MACULAR HOLE SURGERY: Evaluation Based on the International Vitreomacular Traction Study Classification. Retina. 2018 May;38(5):900–906. doi: 10.1097/IAE.0000000000001647.

3. Steel DH, Donachie PHJ, Aylward GW, Laidlaw DA, Williamson TH, Yorston D; BEAVRS Macular hole outcome group. Factors affecting anatomical and visual outcome after macular hole surgery: findings from a large prospective UK cohort. Eye (Lond). 2021 Jan;35(1):316–325. doi: 10.1038/s41433-020-0844-x.

4. Rizzo S, Tartaro R, Barca F, Caporossi T, Bacherini D, Giansanti F. Internal limiting membrane peeling versus inverted flap technique for treatment of full-thickness macular holes: a comparative study in a large series of patients. Retina. 2018 Sep;38 Suppl 1:S73–S78. doi: 10.1097/IAE.0000000000001985.

5. Charles S, Randolph JC, Neekhra A, Salisbury CD, Littlejohn N, Calzada JI. Arcuate retinotomy for the repair of large macular holes. Ophthalmic Surg Lasers Imaging Retina. 2013 Jan-Feb;44(1):69–72. doi: 10.3928/23258160-20121221-15.

6. Meyer CH, Szurman P, Haritoglou C, Maier M, Wolf A, Lytvynchuk L, Priglinger S, Hillenkamp J, Wachtlin J, Becker M, Mennel S, Koss MJ. Application of subretinal fluid to close refractory full thickness macular holes: treatment strategies and primary outcome: APOSTEL study. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2020 Oct;258(10):2151–2161. doi: 10.1007/s00417-020-04735-3.

7. Frisina R, Tozzi L, Sabella P, Cacciatori M, Midena E. Surgically Induced Macular Detachment for Treatment of Refractory Full-Thickness Macular Hole: Anatomical and Functional Results. Ophthalmologica. 2019;242(2):98–105. doi: 10.1159/000500573.

8. Rezende FA, Ferreira BG, Rampakakis E, Steel DH, Koss MJ, Nawrocka ZA, Bacherini D, Rodrigues EB, Meyer CH, Caporossi T, Mahmoud TH, Rizzo S, Johnson MW, Duker JS. Surgical classification for large macular hole: based on different surgical techniques results: the CLOSE study group. Int J Retina Vitreous. 2023 Jan 30;9(1):4. doi: 10.1186/s40942-022-00439-4.

9. Миронов А.В., Магарян Т.О., Кутин И.М., Стальная А.С. Отдаленные результаты хирургического лечения сквозных макулярных разрывов без томпанады витреальной полости. Отражение. 2023;1(15):60–62. doi: 10.25276/2686-6986-2023-160-62.

10. Filardo G, Di Matteo B, Kon E, Merli G, Marcacci M. Platelet-rich plasma in tendon-related disorders: results and indications. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc. 2018 Jul;26(7):1984–1999. doi: 10.1007/s00167-016-4261-4.

11. Belk JW, Kraeutler MJ, Houck DA, Goodrich JA, Dragoo JL, McCarty EC. PlateletRich Plasma Versus Hyaluronic Acid for Knee Osteoarthritis: A Systematic Review and Meta-analysis of Randomized Controlled Trials. Am J Sports Med. 2021 Jan;49(1):249–260. doi: 10.1177/0363546520909397.

12. Xuan Z, Yu W, Dou Y, Wang T. Efficacy of Platelet-rich Plasma for Low Back Pain: A Systematic Review and Meta-analysis. J Neurol Surg A Cent Eur Neurosurg. 2020 Nov;81(6):529–534. doi: 10.1055/s-0040-1709170.

13. Лошкарева А.О., Майчук Д.Ю. Применение богатой тромбоцитами плазмы у пациентов с хроническими эрозиями роговицы. Современные технологии в офтальмологии. 2016;4:131–132. doi: 10.25276/0235-4160-2020-2-20-25.

14. Арбеньева Н.С., Братко В.И., Братко Г.В., Трунов А.Н., Повещенко О.В., Черных В.В. Результаты применения аутологичной плазмы, обогащенной тромбоцитами, в составе комплексной схемы лечения увеита, ассоциированного с системными заболеваниями, сопровождающегося макулярным отеком. Офтальмохирургия. 2020;2:20–25. doi: 10.25276/02354160-2020-2-20-25.

15. Станишевская О.М., Братко В.И., Повещенко О.В., Трунов А.Н., Черных В.В. Первые результаты комплексного лечения центральной серозной хориоретинопатии с использованием субпорогового микроимпульсного лазерного воздействия длиной волны 577 нм и инъекциями тромбоцитарной аутоплазмы. Саратовский научно-медицинский журнал. 2019;15(2):539–543.

16. Alio JL, Rodriguez AE, Ferreira-Oliveira R, Wróbel-Dudzińska D, Abdelghany AA. Treatment of Dry Eye Disease with Autologous Platelet-Rich Plasma: A Prospective, Interventional, Non-Randomized Study. Ophthalmol Ther. 2017 Dec;6(2):285–293. doi: 10.1007/s40123-017-0100-z.

17. Ohlmann P, Eckly A, Freund M, Cazenave JP, Offermanns S, Gachet C. ADP induces partial platelet aggregation without shape change and potentiates collagen-induced aggregation in the absence of Galphaq. Blood. 2000 Sep 15;96(6):2134–2139.

18. Fatisson J, Mansouri S, Yacoub D, Merhi Y, Tabrizian M. Determination of surfaceinduced platelet activation by applying time-dependency dissipation factor versus frequency using quartz crystal microbalance with dissipation. J R Soc Interface. 2011 Jul 6;8(60):988–997. doi: 10.1098/rsif.2010.0617.

19. Марковчин А.А. Физиологические особенности тромбоцитов Современные проблемы науки и образования. 2014;6:1437.

20. Литвинов Р.И., Пешкова А.Д. Контракция (ретракция) сгустков крови и тромбов: патогенетическое и клиническое значение. Альманах клинической медицины. 2018;46(7):662–671. doi: 10.18786/2072-05-05-2018-46-7-66-662-671.

21. Пешкова А.Д., Сайхунов М.В., Демин Т.В., Ложкин А.П., Паносюк М.В., Литвинов Р.И.,Хасанов Д.Р. Контракция (ретракция) сгустков крови у больных с острым ишемическим инсультом. Журнал неврологии и психиатрии им. C.C. Корсакова. Спецвыпуск. 2016;116 (3-2):9–17. doi: 10.17116/jnevro2016116329-17.

22. Маркова Е.Ю., Дубровина К.А., Бегеева Б.Ш., Валявская М.Е., Аминулла Л.В., Пронько Н.А., Венедиктова Л.В. Современные тенденции в лечении воспалительных заболеваний глазной поверхности у детей. Эффективная фармакотерапия. 2019;15(17):12–15. doi: 10.33978/2307-3586-2019-15-17-12-15.

23. Tiu RY. Resolving Vitreous Hemorrhage in the Setting of Diabetic Retinopathy. Mathews J Case Rep. 2019;4(1):43. doi: 10.30654/MJCR.10043.

24. Мининкова А.И. Структура и функции тромбоцитов. Исследование тромбоцитов методом проточной цитофлюориметрии (обзор литературы). Клиническая лабораторная диагностика. 2010;11:21–26.

25. Yakimenko AO, Verholomova FY, Kotova YN, Ataullakhanov FI, Panteleev MA. Identification of different proaggregatory abilities of activated platelet subpopulations. Biophys J. 2012 May 16;102(10):2261–2269. doi: 10.1016/j.bpj.2012.04.004.

26. Медведев В.Л., Коган М.И., Михайлов И.В., Лепетунов С.Н. Аутологичная плазма, обогащенная тромбоцитами: что это и для чего? Вестник урологии. 2020;8(2):67–77. doi: 10.21886/2308-6424-2020-8-2-67-77.

27. Everts P, Onishi K, Jayaram P, Lana JF, Mautner K. Platelet-Rich Plasma: New Performance Understandings and Therapeutic Considerations in 2020. Int J Mol Sci. 2020 Oct 21;21(20):7794. doi: 10.3390/ijms21207794.

28. International Cellular Medicine Society. Guidelines for the use of platelet rich plasma (adopted 2011). Available by: http://www.cellmedicinesociety.org/icmsguidelines (date of application 16.09.2022).

29. Woodell-May JE, Ridderman DN, Swift MJ, Higgins J. Producing accurate platelet counts for platelet rich plasma: validation of a hematology analyzer and preparation techniques for counting. J Craniofac Surg. 2005 Sep;16(5):749–756; discussion 757–759. doi: 10.1097/01.scs.0000180007.30115.fa.

30. Tavukcu HH, Aytaç Ö, Atuğ F, Alev B, Çevik Ö, Bülbül N, Yarat A, Çetinel Ş, Şener G, Kulaksızoğlu H. Protective effect of platelet-rich plasma on urethral injury model of male rats. Neurourol Urodyn. 2018 Apr;37(4):1286–1293. doi: 10.1002/nau.23460.

31. Weiser L, Bhargava M, Attia E, Torzilli PA. Effect of serum and platelet-derived growth factor on chondrocytes grown in collagen gels. Tissue Eng. 1999 Dec;5(6):533–544. doi: 10.1089/ten.1999.5.533.

32. Wang Z, Ahmad A, Li Y, Kong D, Asfar SA, Banerjee S, Sarkar FH. Selective expression of PDGF A and its receptor during early mouse embryogenesis. Biochim Biophys Acta. 2010;180(6):122–130.

33. White JG, Rao GH, Gerrard JM. Effects of the lonophore A23187 on blood platelets I. Influence on aggregation and secretion. Am J Pathol. 1974 Nov;77(2):135–149.

34. Blair P, Flaumenhaft R. Platelet alpha-granules: basic biology and clinical correlates. Blood Rev. 2009 Jul;23(4):177–189. doi: 10.1016/j.blre.2009.04.001. Epub 2009 May 17.

35. Серебряная Н.Б., Шанин С.Н., Фомичева Е.Е., Якуцени П.П. Тромбоциты как активаторы и регуляторы воспалительных и иммунных реакций. Часть 1. Основные характеристики тромбоцитов как воспалительных клеток. Медицинская иммунология. 2018;20(6):785–796.

36. Weyrich AS, Schwertz H, Kraiss LW, Zimmerman GA. Protein synthesis by platelets: historical and new perspectives. J Thromb Haemost. 2009 Feb;7(2):241–246. doi: 10.1111/j.1538-7836.2008.03211.x.

37. Долгушин И.И., Меценцева Е.А., Савочкина А.Ю., Кузнецова Е.К. Нейтрофил как «многофункциональное устройство» иммунной системы. Инфекция и иммунитет. 2019;9(1):9–38. doi: 10.4049/jimmunol.1901121.

38. Iberg CA, Hawiger D. Natural and Induced Tolerogenic Dendritic Cells. J Immunol. 2020 Feb 15;204(4):733–744. doi: 10.4049/jimmunol.1901121.

39. Шамратов Р.З., Рамазанова Л.Ш., Напылова О.А. Дифференцированный подход к тактике хирургического лечения идиопатических макулярных разрывов. The EYE ГЛАЗ. 2021;23(4):12–16. doi: 10.33791/2222-4-12-16.

40. Michalewska Z, Michalewski J, Dulczewska-Cichecka K, Adelman RA, Nawrocki J. Тemporal inverted internal limiting membrane flap technique versus classic inverted internal limiting membrane flap technique: A Comparative Study. Retina. 2015 Sep;35(9):1844–1850. doi: 10.1097/IAE.0000000000000555.

41. Шкворченко Д.О., Захаров В.Д., Крупина Е.А., Письменская В.А., Какунина С.А., Норманн К.С., Петерсен Е.В. Хирургическое лечение первичного макулярного разрывас применением богатой тромбоцитами плазмы крови. Офтальмохирургия. 2017;3:27–30.

42. Chakrabarti M, Benjamin P, Chakrabarti K, Chakrabarti A. Сlosing macular holes with «macular plug» without gas tamponade and postoperative posturing. Retina. 2017 Mar;37(3):451–459. doi: 10.1097/IAE.0000000000001206.

43. Zhu D, Ma B, Zhang J, Huang R, Liu Y, Jing X, Zhou J. Autologous blood clot covering instead of gas tamponade for macular holes. Retina. 2020 Sep;40(9):1751–1756. doi: 10.1097/IAE.0000000000002651.

44. Клейменов А.Ю., Казайкин В.Н., Липина М.А. Сравнительный анализ эффективности хирургического лечения сквозных макулярных разрывов с применением и без применения послеоперационной газовой тампонады витреальной полости. Офтальмохирургия. 2022;2:6–14. dio: 10.25276/0235-4160-2022-2-6-14.