Preview

Офтальмология

Расширенный поиск

Современная концепция избыточного рубцевания в хирургии глаукомы

https://doi.org/10.18008/1816-5095-2015-4-9-17

Полный текст:

Аннотация

Послеоперационное рубцевание является одним из ключевых факторов, определяющих успех фильтрующей хирургии в отдаленном периоде. Рубцевание тканей — физиологический ответ организма, направленный на восстановление тканевой структуры и функций посредством ряда взаимосвязанных клеточных процессов. Хирургическая травма способствует проникновению белков плазмы крови в зону фильтрации внутриглазной жидкости, запуску каскада реакций свертывания и активации комплемента. Процесс заживления раны делится на три взаимосвязанных этапа: воспаление, пролиферация и ремодуляция рубца. Воспаление считается защитным ответом на повреждение, позволяющим сохранить структурную целостность и клеточные функции тканей. Оно характеризуется поступлением в рану нейтрофилов и моноцитов. Нейтрофилы фагоцитируют инфицирующие рану бактерии и очищают зону повреждения. Макрофаги способствуют санации раневой полости, участвуют в фагоцитозе и вырабатывают ряд факторов, необходимых для формирования новой ткани. В ходе пролиферативной фазы происходит реэпителизация и формирование грануляционной ткани с высвобождением факторов роста, стимулирующих образование внеклеточного матрикса и пролиферацию фибробластов. Завершающий этап заживления раны характеризуется ремоделированием матрикса с очищением раны благодаря одновременному синтезу и разрушению компонентов матрикса, дифференцировкой клеток, их созреванием и апоптозом. Нарушение апоптоза удлиняет срок жизни фибробластов и способствует избыточному рубцеванию. Считается, что ключевую роль в рубцевании различных тканей играют три фактора роста: трансформирующий фактор роста β, фактор роста соединительной ткани, сосудистый эндотелиальный фактор роста. Представлен обзор их изоформ, роли в процессе рубцевания и возможности их ингибирования в лечебных целях. Матриксные металлопротеиназы представляют собой семейство белков, которые способны расщеплять компоненты внеклеточного матрикса. Предположительно, они играют ключевую роль в контрактуре фильтрационной подушки за счет своего влияния на фибробласты теноновой капсулы. Селективное ингибирование металлопротеиназ после фильтрующей хирургии глаукомы оказывает превентивное действие на стягивание фильтрационной подушки в послеоперационном периоде, позволяя уменьшить вероятность неудачного исхода.

Об авторах

С. Ю. Петров
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение Научно-исследовательский институт глазных болезней
Россия
ул. Россолимо, д. 11а, Москва, 119021


Д. М. Сафонова
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение Научно-исследовательский институт глазных болезней
Россия
ул. Россолимо, д. 11а, Москва, 119021


Список литературы

1. European Glaucoma S. Terminology and guidelines for glaucoma. 4th edition ed: Savona, Italy PubliComm 2014.; 2014.

2. Shaarawy T.M., Sherwood M.B., Hitchings R.A., Crowston J.G. Glaucoma, Vol. 2: Surgical Management. Second edition ed: Elsevier; 2015.

3. Costa V.P., Spaeth G.L., Eiferman R.A., Orengo-Nania S. Wound healing modulation in glaucoma filtration surgery. Ophthalmic surgery 1993; 24 (3): 152‑170.

4. Desjardins D.C., Parrish R.K., Folberg R., Nevarez J., et al. Wound healing after filtering surgery in owl monkeys. Archives of ophthalmology 1986; 104 (12): 1835‑1839.

5. Shaarawy T.M., Sherwood M.B., Hitchings R.A., Crowston J.G. Glaucoma, Vol. 2: Surgical Management. First edition ed: Elsevier; 2009.

6. Clark R.A. Potential roles of fibronectin in cutaneous wound repair. Archives of dermatology 1988; 124 (2): 201‑206.

7. Postlethwaite A.E., Kang A.H. Collagen-and collagen peptide-induced chemotaxis of human blood monocytes. The Journal of experimental medicine 1976; 143 (6): 1299‑1307.

8. Barbul A., Regan M.C. Immune involvement in wound healing. Otolaryngologic clinics of North America 1995; 28 (5): 955‑968.

9. Leibovich S.J., Ross R. A macrophage-dependent factor that stimulates the proliferation of fibroblasts in vitro. The American journal of pathology 1976; 84 (3): 501‑514.

10. Leibovich S.J., Ross R. The role of the macrophage in wound repair. A study with hydrocortisone and antimacrophage serum. The American journal of pathology 1975; 78 (1): 71‑100.

11. Sheridan C.M., Unger W.G., Ayliffe W., Alam Y., et al. Macrophages during fibrosis following scleral fistulising surgery in a rat model. Current eye research 1996; 15 (5): 559‑568.

12. Chang L., Crowston J.G., Cordeiro M.F., Akbar A.N., et al. The role of the immune system in conjunctival wound healing after glaucoma surgery. Survey of ophthalmology 2000; 45 (1): 49‑68.

13. Barbul A., Shawe T., Rotter S.M., Efron J.E., et al. Wound healing in nude mice: a study on the regulatory role of lymphocytes in fibroplasia. Surgery 1989; 105 (6): 764‑769.

14. Krawczyk W.S., Wilgram G.F. Hemidesmosome and desmosome morphogenesis during epidermal wound healing. Journal of ultrastructure research 1973; 45 (1): 93‑101.

15. Nguyen B.P., Gil S.G., Carter W.G. Deposition of laminin 5 by keratinocytes regulates integrin adhesion and signaling. The Journal of biological chemistry 2000; 275 (41): 31896‑31907.

16. Gabbiani G., Chaponnier C., Huttner I. Cytoplasmic filaments and gap junctions in epithelial cells and myofibroblasts during wound healing. The Journal of cell biology 1978; 76 (3): 561‑568.

17. Nissen N.N., Polverini P.J., Koch A.E., Volin M.V., et al. Vascular endothelial growth factor mediates angiogenic activity during the proliferative phase of wound healing. The American journal of pathology 1998; 152 (6): 1445‑1452.

18. Moulin V., Castilloux G., Auger F.A., Garrel D., et al. Modulated response to cytokines of human wound healing myofibroblasts compared to dermal fibroblasts. Experimental cell research 1998; 238 (1): 283‑293.

19. Sappino A.P., Schurch W., Gabbiani G. Differentiation repertoire of fibroblastic cells: expression of cytoskeletal proteins as marker of phenotypic modulations. Laboratory investigation; a journal of technical methods and pathology 1990; 63 (2): 144‑161.

20. Deryugina E.I., Bourdon M.A., Reisfeld R.A., Strongin A. Remodeling of collagen matrix by human tumor cells requires activation and cell surface association of matrix metalloproteinase-2. Cancer research 1998; 58 (16): 3743‑3750.

21. Hynes R.O. Integrins: versatility, modulation, and signaling in cell adhesion. Cell 1992; 69 (1): 11‑25.

22. Gailit J., Pierschbacher M., Clark R.A. Expression of functional alpha 4 beta 1 integrin by human dermal fibroblasts. The Journal of investigative dermatology 1993; 100 (3): 323‑328.

23. Miller M.H., Grierson I., Unger W.I., Hitchings R.A. Wound healing in an animal model of glaucoma fistulizing surgery in the rabbit. Ophthalmic surgery 1989; 20 (5): 350‑357.

24. Desmouliere A., Badid C., Bochaton-Piallat M.L., Gabbiani G. Apoptosis during wound healing, fibrocontractive diseases and vascular wall injury. The international journal of biochemistry & cell biology 1997; 29 (1): 19‑30.

25. Desmouliere A., Redard M., Darby I., Gabbiani G. Apoptosis mediates the decrease in cellularity during the transition between granulation tissue and scar. The American journal of pathology 1995; 146 (1): 56‑66.

26. Baker A.J., Mooney A., Hughes J., Lombardi D., et al. Mesangial cell apoptosis: the major mechanism for resolution of glomerular hypercellularity in experimental mesangial proliferative nephritis. The Journal of clinical investigation 1994; 94 (5): 2105‑2116. 27. Polunovsky V.A., Chen B., Henke C., Snover D., et al. Role of mesenchymal cell death in lung remodeling after injury. The Journal of clinical investigation 1993; 92 (1): 388‑397.

27. Grinnell F., Zhu M., Carlson M.A., Abrams J.M. Release of mechanical tension triggers apoptosis of human fibroblasts in a model of regressing granulation tissue. Experimental cell research 1999; 248 (2): 608‑619.

28. Crowston J.G., Akbar A.N., Constable P.H., Occleston N.L., et al. Antimetaboliteinduced apoptosis in Tenon’s capsule fibroblasts. Investigative ophthalmology & visual science 1998; 39 (2): 449‑454.

29. Crowston J.G., Chang L.H., Constable P.H., Daniels J.T., et al. Apoptosis gene expression and death receptor signaling in mitomycin-C-treated human tenon capsule fibroblasts. Investigative ophthalmology & visual science 2002; 43 (3): 692‑699.

30. Martin C.W., Muir I.F. The role of lymphocytes in wound healing. British journal of plastic surgery 1990; 43 (6): 655‑662.

31. Darby I.A., Bisucci T., Hewitson T.D., MacLellan D.G. Apoptosis is increased in a model of diabetes-impaired wound healing in genetically diabetic mice. The international journal of biochemistry & cell biology 1997; 29 (1): 191‑200.

32. DeRisi J. L., Iyer V.R., Brown P.O. Exploring the metabolic and genetic control of gene expression on a genomic scale. Science 1997; 278 (5338): 680‑686.

33. Esson D.W., Popp M.P., Liu L., Schultz G.S., Sherwood M.B. Microarray analysis of the failure of filtering blebs in a rat model of glaucoma filtering surgery. Investigative ophthalmology & visual science 2004; 45 (12): 4450‑4462.

34. Popp M.P., Liu L., Timmers A., Esson D.W., et al. Development of a microarray chip for gene expression in rabbit ocular research. Molecular vision 2007; 13: 164‑173.

35. Blobe G.C., Schiemann W.P., Lodish H.F. Role of transforming growth factor beta in human disease. The New England journal of medicine 2000; 342 (18): 1350‑1358.

36. Border W.A., Noble N.A. Transforming growth factor beta in tissue fibrosis. The New England journal of medicine 1994; 331 (19): 1286‑1292.

37. O’Kane S., Ferguson M.W. Transforming growth factor beta s and wound healing. The international journal of biochemistry & cell biology 1997; 29 (1): 63‑78.

38. Roberts A.B. Transforming growth factor-beta: activity and efficacy in animal models of wound healing. Wound repair and regeneration: official publication of the Wound Healing Society [and] the European Tissue Repair Society 1995; 3 (4): 408‑418.

39. Curtsinger L.J., Pietsch J.D., Brown G.L., von Fraunhofer A., et al. Reversal of Adriamycin-impaired wound healing by transforming growth factor-beta. Surgery, gynecology & obstetrics 1989; 168 (6): 517‑522.

40. Shah M., Foreman D.M., Ferguson M.W. Neutralising antibody to TGF-beta 1,2 reduces cutaneous scarring in adult rodents. Journal of cell science 1994; 107 (Pt 5): 1137‑1157.

41. Yoshino K., Garg R., Monroy D., Ji Z., Pflugfelder S.C. Production and secretion of transforming growth factor beta (TGF-beta) by the human lacrimal gland. Current eye research 1996; 15 (6): 615‑624.

42. Vesaluoma M., Teppo A.M., Gronhagen-Riska C., Tervo T. Release of TGF-beta 1 and VEGF in tears following photorefractive keratectomy. Current eye research 1997; 16 (1): 19‑25.

43. Chen C., Michelini-Norris B., Stevens S., Rowsey J., et al. Measurement of mRNAs for TGFss and extracellular matrix proteins in corneas of rats after PRK. Investigative ophthalmology & visual science 2000; 41 (13): 4108‑4116.

44. Brigstock D.R. The connective tissue growth factor/cysteine-rich 61/nephroblastoma overexpressed (CCN) family. Endocrine reviews 1999; 20 (2): 189‑206.

45. Grotendorst G.R. Connective tissue growth factor: a mediator of TGF-beta action on fibroblasts. Cytokine & growth factor reviews 1997; 8 (3): 171‑179.

46. Moussad E.E., Brigstock D.R. Connective tissue growth factor: what’s in a name? Molecular genetics and metabolism 2000; 71 (1-2): 276‑292.

47. Duncan M.R., Frazier K.S., Abramson S., Williams S., et al. Connective tissue growth factor mediates transforming growth factor beta-induced collagen synthesis: down-regulation by cAMP. FASEB journal: official publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology 1999; 13 (13): 1774‑1786.

48. Igarashi A., Okochi H., Bradham D.M., Grotendorst G.R. Regulation of connective tissue growth factor gene expression in human skin fibroblasts and during wound repair. Molecular biology of the cell 1993; 4 (6): 637‑645.

49. Esson D.W., Neelakantan A., Iyer S.A., Blalock T.D., et al. Expression of connective tissue growth factor after glaucoma filtration surgery in a rabbit model. Investigative ophthalmology & visual science 2004; 45 (2): 485‑491.

50. Cordeiro M.F., Bhattacharya S.S., Schultz G.S., Khaw P.T. TGF-beta1, — beta2, and -beta3 in vitro: biphasic effects on Tenon’s fibroblast contraction, proliferation, and migration. Investigative ophthalmology & visual science 2000; 41 (3): 756‑763.

51. Cordeiro M.F., Reichel M.B., Gay J.A., D’Esposita F., et al. Transforming growth factor-beta1, — beta2, and -beta3 in vivo: effects on normal and mitomycin Cmodulated conjunctival scarring. Investigative ophthalmology & visual science 1999; 40 (9): 1975‑1982.

52. Khaw P.T., Occleston N.L., Schultz G., Grierson I., et al. Activation and suppression of fibroblast function. Eye 1994; 8 (Pt 2): 188‑195.

53. Wong J., Wang N., Miller J.W., Schuman J.S. Modulation of human fibroblast activity by selected angiogenesis inhibitors. Experimental eye research 1994; 58 (4): 439‑451.

54. Hu D.N., Ritch R., Liebmann J., Liu Y., et al. Vascular endothelial growth factor is increased in aqueous humor of glaucomatous eyes. Journal of glaucoma 2002; 11 (5): 406‑410.

55. Lopilly H.Y., Kim J.H., Ahn M.D., Park C.K. Level of vascular endothelial growth factor in tenon tissue and results of glaucoma surgery. Archives of ophthalmology 2012; 130 (6): 685‑689.

56. Li Z., Van Bergen T., Van de Veire S., Van de Vel I., et al. Inhibition of vascular endothelial growth factor reduces scar formation after glaucoma filtration surgery. Investigative ophthalmology & visual science 2009; 50 (11): 5217‑5225.

57. Daniels J.T., Cambrey A.D., Occleston N.L., Garrett Q., et al. Matrix metalloproteinase inhibition modulates fibroblast-mediated matrix contraction and collagen production in vitro. Investigative ophthalmology & visual science 2003; 44 (3): 1104‑1110.

58. Wong T.T., Mead A.L., Khaw P.T. Matrix metalloproteinase inhibition modulates postoperative scarring after experimental glaucoma filtration surgery. Investigative ophthalmology & visual science 2003; 44 (3): 1097‑1103.

59. Wong T.T., Mead A.L., Khaw P.T. Prolonged antiscarring effects of ilomastat and MMC after experimental glaucoma filtration surgery. Investigative ophthalmology & visual science 2005; 46 (6): 2018‑2022.

60. Parrish R., Minckler D. «Late endophthalmitis» — filtering surgery time bomb? Ophthalmology 1996; 103 (8): 1167‑1168.


Для цитирования:


Петров С.Ю., Сафонова Д.М. Современная концепция избыточного рубцевания в хирургии глаукомы. Офтальмология. 2015;12(4):9-17. https://doi.org/10.18008/1816-5095-2015-4-9-17

For citation:


Petrov S.Y., Safonova D.M. The modern concept of wound healing in glaucoma surgery. Ophthalmology in Russia. 2015;12(4):9-17. (In Russ.) https://doi.org/10.18008/1816-5095-2015-4-9-17

Просмотров: 369


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1816-5095 (Print)
ISSN 2500-0845 (Online)