Визуализация решетчатой пластинки склеры с помощью оптической когерентной томографии. Возможности и перспективы диагностики. Обзор

Решетчатая пластинка склеры представляет собой многослойную дифференцированную структуру, состоящую из пластов соединительной ткани, представленной коллагеном различного типа. Соотношение коллагеновых волокон I, II и IV типов, а также белка эластина обеспечивает опорные и эластические свойства решетчатой пластинки, имеющей ограниченную резистентность. Повышенное внутриглазное давление на фоне инволюционных изменений состава соединительной ткани решетчатой пластинки приводит к ее деформации, компрессии нервных волокон, проходящих через отверстия в решетчатой пластинке и, как следствие, к нарушению аксоплазматического тока. Современные оптические когерентные томографы высокого разрешения позволяют визуализировать границы решетчатой пластинки, а стандартное программное обеспечение, интегрированное в каждый прибор, дает возможность измерять параметры решетчатой пластинки. Проблемой остается визуализация решетчатой пластинки на ранних стадиях глаукомы из-за выраженности преламинарной ткани и экранирования поверхности решетчатой пластинки. Обзор содержит результаты ряда исследований различных офтальмологов. Обнаружена зависимость таких показателей решетчатой пластинки, как глубина, толщина, угол наклона и кривизна, от колебаний внутриглазного давления и стадии глаукомного процесса. Данные исследования подтверждают возможность визуализации решетчатой пластинки, открывают перспективы для изучения патогенеза глаукомы и расширяют возможности поиска новых методов лечения глаукомной оптической нейропатии, основываясь на патогенетических аспектах. Однако малое количество статей по данной тематике, встречаемое в литературе, небольшая выборка исследуемых групп в большинстве работ требуют дальнейшего изучения вопроса визуализации решетчатой пластинки при помощи оптической когерентной томографии для последующего внедрения в практическую офтальмологию.

решетчатая пластинка, оптическая когерентная томография, внутриглазное давление, глаукомная оптическая нейропатия

1. Tham Y.C., Li X., Wong T.Y., Quigley H.A., Aung T., Cheng C.Y. Global prevalence of glaucoma and projections of glaucoma burden through 2040: a systematic review and meta-analysis. J Ophthalmology. 2014 Nov; 121(11):2081–2090. DOI: 10.1016/j.ophtha.2014.05.013

2. Heijl А., Aspberg J., Bengtsson B. The effect of different criteria on the number of patients blind from open-angle glaucoma. BMC Ophthalmol. 2011;11:31. DOI: 10.1186/1471-2415-11-31

3. Resnikoff S., Pascolini D., Etya’ale D., Kocur I., Pararajasegaram R., Pokharel G.P., Mariotti S.P. Global data on visual impairment in the year 2002. Bull World Health Organ. 2004 Nov; 82(11):844–851. DOI: /S0042-96862004001100009

4. Ермолаев В.Г., Ермолаев А.В., Ермолаев С.В. Социальные параметры инвалид ности больных с глаукомой. Современные наукоемкие технологии. 2010;2:90– 91.

5. Алексеев В.Н., Газизова И.Р. Нейродегенеративные изменения у больных пер вичной открытоугольной глаукомой. Практическая медицина. 2012;4:154– 156.

6. Волков В.В. Глаукома при псевдонормальном давлении. М.: Медицина; 2001:352. [Volkov V.V. Glaucoma with pseudonormal pressure. Moscow: Medit sina; 2001:352 (In Russ.)].

7. Нестеров А.П. Глаукома. М.: Медицина; 2008:360.

8. Roberts M.D., Sigal I.A., Liang Y., Burgoyne C.F., Downs J.C. Changes in the bio mechanical response of the optic nerve head in early experimental glaucoma. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2010;51(11):5675–5684. DOI: 10.1167/iovs.10-5411

9. Quigley H.A., Addicks E.M., Green W.R., Maumenee A.E. Optic nerve damage in human glaucoma. II. The site of injury and susceptibility to damage. Arch Ophthalmol. 1981;99(4):635–649.

10. Quigley H.A., Addicks E.M. Regional differences in the structure of the lamina cribrosa and their relation to glaucomatous optic nerve damage. Arch Ophthalmol. 1981;99(1):137–143.

11. Quigley H.A. Glaucoma: Macrocosm to microcosm. The Friedenwald Lecture. investigative Ophthalmology and visual Science. 2005;2663–2670. DOI: 10.1167/ iovs.04-1070

12. Morgan J.E. Circulation and axonal transport in the optic nerve. Eye (Lond). 2004;18:1089–1095. DOI: 10.1038/sj.eye.6701574

13. Hayreh S.S. Pathogenesis of cupping of the optic disc. Br J Ophthalmol. 1974;58:863–876.

14. Burgoyne C.F., Downs J.C., Bellezza A.J., Suh J.K., Hart R.T. The optic nevre head as a biomechanical structure: a new paradigm for understanding the role of IOPrelated stress and strain in the pathophysiology of glaucomatous optic nerve head damage. Prog Retin Eye Res. 2005;24:39–73. DOI: 10.1016/j.preteyeres.2004.06.001

15. Hernandez M.R., Pena J.D., Selvidge J.A. Salvador-Silva M., Yang P. Hydrostatic pressure stimulates synthesis of elastin in cultured optic nerve head astrocytes. Glia. 2000;32(2):122–136.

16. Morgan J., Waldock A. Retinal nerve fiber layer polarymetry histological and clini cal comparison. Br. J. Ophthalmol. 1998;82:684–690.

17. Pena J.D., Netland P.A., Vidal I. Elastosis of the lamina cribrosa in glaucomatous optic neuropathy. Exp. Eye Res.1998;67(5):517–524.

18. Pena J.D., Agapova O., Gabelt B.T., Levin L.A., Lucarelli M.J., Kaufman P.L., Hernan dez M.R. Increased elastin expression in astrocytes of the lamina cribrosa in response to elevated intraocular pressure. Invest. Ophthalmol. 2001;42(10):2302–2314.

19. Spoerl E., Goehm A., Pillunat L. The influence of various substances on the biome chanical behavior of lamina cribrosa and peripapillary sclera. Invest. Ophthalmol. 2005;46:1286–1290.

20. Wax M., Barett D., Pestronk A. Increased incidence of paraproteinemia and outoan tibodies in patients with glaucoma. Invest. Ophthalmol. 1994;117:561–568.

21. Naranjo-Bonilla P., Giménez-Gómez R., Ríos-Jiménez D., Varas-Fabra M.L., MuñozVillanueva M.D., García-Catalán R., Font-Ugalde P., Poblador-Fernández M.S., LanchoAlonso J.L., Gallardo-Galera J.M. Enhanced depth OCT imaging of the lamina cribrosa for 24 hours. J Ophthalmol. 2017;18.10(2):306–309 DOI: 10.18240 /ijo.2017.02.20

22. Gizzi С., Cellini М., Campos E.C. In vivo assessment of changes in corneal hyster esis and lamina cribrosa position during acute intraocular pressure elevation in eyes with markedly asymmetrical glaucoma. Clin Ophthalmol. 2018;12:481–492. DOI: 10.2147/OPTH.S151532

23. Shoji T., Kuroda H., Suzuki M., Ibuki H., Araie M., Yoneya S. Vertical asymmetry of lamina cribrosa tilt angles using wide bandwidth, femtosecond mode-locked laser OCT; effect of myopia and glaucoma. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2017 Jan; 255(1):197–205. DOI: 10.1007/s00417-016-3524-6

24. Kim Y.W., Jeoung J.W., Girard M.J., Mari J.M., Park K.H. Positional and Curvature Dif ference of Lamina Cribrosa According to the Baseline Intraocular Pressure in Primary Open-Angle Glaucoma: A Swept-Source Optical Coherence Tomography (SS-OCT) Study. Send to PLoS One. 2016 Sep;11(9):e0162182. DOI: 10.1371/journal.pone.0162182

25. Park H.L., Kim S.I., Park C.K. Influence of the lamina cribrosa on the rate of global and localized retinal nerve fiber layer thinning in open-angle glaucoma. Medicine (Baltimore). 2017 Apr;96(14):e6295. DOI: 10.1097/MD.0000000000006295

26. Krzyżanowska-Berkowska P., Melińska A., Helemejko I, Iskander R. Evaluating dis placement of lamina cribrosa following glaucoma surgery. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2018;256(4):791–800. DOI: 10.1007/s00417-018-3920-1