Микроструктура роговицы в норме у кроликов породы шиншилла по данным конфокальной микроскопии

Цель — определение нормальной микроструктуры роговицы у кроликов породы шиншилла по данным конфокальной микроскопии.
Материал и методы. Конфокальная микроскопия роговицы выполнена у 10 кроликов-самцов породы шиншилла весом от 3500 до 4200 г. В исследование включали один (правый) глаз животного. Конфокальную микроскопию роговицы выполняли на лазерном сканирующем микроскопе HRT-3 (Heidelberg Engineering, Германия) с использованием специального роговичного модуля Rostock Cornea Module (RCM), с областью сканирования 400×400 мкм, поперечным и аксиальным разрешением 1–2 и 4 мкм соответственно, скорость сканирования — 30 кадров в секунду, размер получаемых изображений — 384×384 пикселя.
Результаты. В ходе проведения конфокальной микроскопии роговицы у всех животных удалось получить изображения с дифференцировкой ее субструктур. Толщина роговицы кроликов варьировала в пределах 340–359 мкм. Полученные данные конфокальной микроскопии показали, что структура роговицы кролика породы шиншилла не имеет существенных отличий от нормальной структуры роговицы человека.
Заключение. Использование кроликов породы шиншилла целесообразно в экспериментальных моделях, связанных с имитацией заболеваний эпителия, стромы и эндотелия роговицы. При моделировании заболеваний и изучении патогенетических механизмов их развития на животных необходимо помнить о том, что одни и те же заболевания в организме лабораторных животных и человека могут развиваться по различным сценариям в связи с различиями в клеточном метаболизме.

1. Шпак АА. Новая номенклатура оптической когерентной томографии. Офтальмохирургия. 2015;3:80.

2. Шпак АА. Оптическая когерентная томография: проблемы и решения: руководство. М.: Офтальмология; 2019:148.

3. Малюгин БЭ, Шпак АА. Современные методы визуализации переднего отрезка глаза. М.: Офтальмология; 2023:128.

4. Jalbert I, Stapleton F, Papas E, Sweeney DF, Coroneo M. In vivo confocal microscopy of the human cornea. Br J Ophthalmol. 2003;87:225–236. doi: 10.1136/bjo.87.2.225.

5. Patel DV, McGhee CN. Contemporary in vivo confocal microscopy of the living human cornea using white light and laser scanning techniques: A major review. Clin Experiment Ophthalmol. 2007;35:71–88. doi: 10.1111/j.1442-9071.2007.01423.x.

6. Guthoff RF, Zhivov A, Stachs O. In vivo confocal microscopy, an inner vision of the cornea—A major review. Clin Experiment Ophthalmol. 2009;37:100–117. doi: 10.1111/j.1442-9071.2009.02016.x.

7. Азнабаев БМ, Алимбекова ЗФ, Мухамадеев ТР, Габбасов АР. Лазерная сканирующая томография глаза передний и задний сегмент. М.: Август Борг; 2008:221.

8. Терещенко АВ, Белый ЮА, Тахчиди ЕХ, Новиков СВ, Майчук НВ, Усанова ГЮ. Экспериментальное исследование влияния 0,1 % раствора бензалкония хлорида на состояние роговицы у кроликов. Вестник Оренбургского государственного университета. 2015;12(187):238 –243.

9. Hovakimyan M, Guthoff R, Knappe S, Zhivov A, Wree A, Krüger A, Heisterkamp A, Stachs O. Short-term corneal response to cross-linking in rabbit eyes assessed by in vivo confocal laser scanning microscopy and histology. Cornea. 2011;30(2):196– 203. doi: 10.1097/ICO.0b013e3181e16d93.

10. Vohra M, Gour A, Rajput J, Sangwan B, Chauhan M, Goel K, Kamath A, Mathur U, Chandru A, Sangwan VS, Bhowmick T, Tiwari A. Chemical (Alkali) Burn-Induced Neurotrophic Keratitis Model in New Zealand Rabbit Investigated Using Medical Clinical Readouts and In Vivo Confocal Microscopy (IVCM). Cells. 2024;13(5):379. doi: 10.3390/cells13050379.

11. Daull P, Raymond E, Feraille L, Garrigue JS. Safety and Tolerability of Overdosed Artificial Tears by Abraded Rabbit Corneas. J Ocul. Pharmacol Ther. 2018;34(10):670–676. doi: 10.1089/jop.2018.0040.

12. Wozniak KT, Butler SC, He X, Ellis JD, Knox WH, Huxlin KR. Temporal evolution of the biological response to laser-induced refractive index change (LIRIC) in rabbit corneas. Exp Eye Res. 2021;207:108579. doi: 10.1016/j.exer.2021.108579.

13. Chen W, Dong N, Huang C, Zhang Z, Hu J, Xie H, Pan J, Liu Z. Corneal alterations induced by topical application of commercial latanoprost, travoprost and bimatoprost in rabbit. PLoS One. 2014;9(3):e89205. doi: 10.1371/journal.pone.0089205.

14. Li HF, Petroll WM, Møller-Pedersen T, MaurerJK, Cavanagh HD, JesterJV. Epithelial and corneal thickness measurements by in vivo confocal microscopy through focusing (CMTF). Curr Eye Res. 1997;16(3):214–221. doi: 10.1076/ceyr.16.3.214.15412.

15. JesterJV, Andrews PM, PetrollWM, LempMA, CavanaghHD. In vivo, real-time confocal imaging. J Electron Microsc Tech. 1991;18(1):50–60. doi: 10.1002/jemt.1060180108.

16. Jester JV, Petroll WM, Garana RM, Lemp MA, Cavanagh HD. Comparison of in vivo and ex vivo cellular structure in rabbit eyes detected by tandem scanning microscopy. J Microsc. 1992;165(1):169–181. doi: 10.1111/j.1365-2818.1992.tb04314.x.

17. Labbé A, Liang H, Martin C, Brignole-Baudouin F, Warnet JM, Baudouin C. Comparative anatomy of laboratory animal corneas with a new-generation highresolution in vivo confocal microscope. Curr Eye Res. 2006;31(6):501–509. doi: 10.1080/02713680600701513.

18. Ghasemi A, Zahediasl S. Normality tests for statistical analysis: a guide for non-statisticians. International journal of endocrinology and metabolism. 2012;10(2):486– 489. doiЖ 10.5812/ijem.3505.

19. Guthoff RF, Baudouin C, Stave J. Atlas of Confocal Laser Scanning In Vivo Microscopy in Ophthalmology. Berlin: Heidelberg/Springer; 2006.

20. Reichard M, Hovakimyan M, Wree A, Meyer-Lindenberg A, Nolte I, Junghans C, Guthoff R, Stachs O. Comparative in vivo confocal microscopical study of the cornea anatomy of different laboratory animals. Curr Eye Res. 2010;35(12):1072–1080. doi: 10.3109/02713683.2010.513796.

21. Petroll WM, Boettcher K, Barry P, Cavanagh HD, Jester JV. Quantitative assessment of anteroposterior keratocyte density in the normal rabbit cornea. Cornea. 1995;14(1):3–9.

22. Patel SV, McLaren JW, Camp JJ, Nelson LR, Bourne WM. Automated quantification of keratocyte density by using confocal microscopy in vivo. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1999;40(2):320–326.

23. Doughty MJ. The cornea and corneal endothelium in the aged rabbit.Optom Vis Sci. 1994;71(12):809–818. doi: 10.1097/00006324-199412000-00013.